Молекулярно-генетическая диагностика и особенности видовой структуры патогенной флоры при хламидийном и микоплазменном инфицировании респираторного тракта у детей
https://doi.org/10.51523/2708-6011.2019-16-4-2
Аннотация
Цель: установить особенности инфицирования Сhlamydia trachomatis, Сhlamydia pneumoniae , Mycoplasma hominis , Mycoplasma pneumoniae детей с бронхитами и пневмониями и усовершенствовать методологию молекулярно-генетической диагностики респираторных инфекций, обусловленных хламидиями и микоплазмами.
Материалы и методы. Обследовано 272 ребенка от рождения до 17 лет с диагнозами: «Бронхит», «Пневмония» на наличие хламидийно-микоплазменного инфицирования респираторного тракта методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР РВ).
Результаты. Выявлена высокая доля ассоциаций хламидий и микоплазм (23 %) с основным участием Mycoplasma pneumoniae в составе ассоциаций - 73 %. Идентификация ассоциаций Сhlamydia trachomatis , Сhlamydia pneumoniae , Mycoplasma hominis , Mycoplasma pneumoniae при бронхитах и пневмониях у детей оптимизирована применением метода ПЦР РВ с использованием Chlamydiaceae -специфичных и Mycoplasm a-специфичных праймеров.
Заключение. Для подтверждения этиологической роли хламидий и микоплазм в развитии респираторной патологии у детей перспективно применение специфичного и высокочувствительного метода молекулярно-генетической диагностики - ПЦР РВ.
Об авторе
Т. В. Глинкина
Государственное учреждение образования «Белорусская медицинская академия последипломного образования»
Беларусь
Беларусь
Глинкина Т.В., научный сотрудник Научно-исследовательской лаборатории Белорусской медицинской академии последипломного образования
Список литературы
1. Жерносек ВФ, Орынбасарова КК, Батырханов ШК. Острая пневмония у детей: лечение, профилактика: учеб.-метод. пособие. Минск, Беларусь: БелМАПО; 2013. 51 с. https://b-ok.org/book/3244088/82f05f.
2. Hao Y, Kuang Z, Jing J, Miao J, Mei LY, Lee RJ, Kim S, Choe S, Krause DC, Lau GW. Mycoplasma pneumoniae modulates STAT3-STAT6/EGFR-FOXA2 signaling to induce overexpression of airway mucins. Infect Immun. 2014 Dec;82(12):5246-55. doi:10.1128/IAI.01989-14.
3. Kem JM, Maass V, Maass M. Molecular pathogenesis of chronic Chlamydia pneumoniae infection: a brief overview. Clin Microbiol Infect. 2009;15(1):36-41. doi: https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2008.02631.x.
4. She RC, Thurber A, Hymas WC, Stevenson J, Langer J, Litwin CM, Petti CA. Limited utility of culture for Mycoplasma pneumoniae and Chlamydophila pneumoniae for diagnosis of respiratory tract infections. J Clin Microbiol. 2010 Sep;48(9):3380-82. doi:10.1128/JCM.00321-10.
5. Bailey L. Infection biology of Chlamydia pneumoniae. Sweden: Umeå University; 2008. 70 p. https://pdfs.semanticscholar.org/44c8/8eb59ba8022fc28e9de6cd3d3215b7e56df9.pdf.
6. Choroszy-Król I, Frej-Mądrzak M, Hober M, Sarowska J, Jama-Kmiecik A. Infections caused by Chlamydophila pneumoniae. Adv Clin Exp Med. 2014;23:123-26. http://www.advances.umed. wroc.pl/pdf/2014/23/1/123.pdf.
7. Ewig S, Torres A. Is Chlamydia pneumoniae an important pathogen in patients with community-acquired pneumonia? Eur Respir J. 2003;21:741-42. doi:10.1183/09031936.03.00023003.
8. Saraya T, Kurai D, Nakagaki K, Sasaki Y, Niwa S, Tsukagoshi H, Nunokawa H, Ohkuma K, Tsujimoto N, Hirao S, Wada H, Ishii H, Nakata K, Kimura H, Kozawa K, Takizawa H, Goto H. Novel aspects on the pathogenesis of Mycoplasma pneumoniae and therapeutic implications [Electronic resource]. Front Microbiol. 2014;5. [дата обращения: 2019 Mай 14]. doi:10.3389/fmicb.2014.00410.
9. Bradley JS, Byington CL, Shah SS, Alverson B, Carter ER, Harrison C, Kaplan SL, Mace SE, McCracken GH Jr, Moore MR, St Peter SD, Stockwell JA, Swanson JT. Pediatric Infectious Diseases Society and the Infectious Diseases Society of America. Executive summary: the management of community-acquired pneumonia in infants and children older than 3 months of age: clinical practice guidelines by the Pediatric Infectious Diseases Society and the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2011 Oct;53(7):617-30. doi: 10.1093/cid/cir625.
10. Dowell SF, Peeling RW, Boman J, Carlone GM, Fields BS, Guarner J, Hammerschlag MR, Jackson LA, Kuo CC, Maass M, Messmer TO, Talkington DF, Tondella ML, Zaki SR. Standardizing Chlamydia pneumoniae Assays: Recommendations from the Centers for Disease Control and Prevention (USA) and the Laboratory Centre for Disease Control (Canada). Clin Infect Dis. 2001 Aug;33(4):492-503. https://doi.org/10.1086/322632.
11. Chang HY, Chang LY, Shao PL, Lee PI, Chen JM, Lee CY, Lu CY, Huang LM. Comparison of real-time polymerase chain reaction and serological tests for the confirmation of Mycoplasma pneumoniae infection in children with clinical diagnosis of atypical pneumonia. J Microbiol Immunol Infect. 2014 Apr;47(2):137-44. doi: 10.1016/j.jmii.2013.03.015.
12. Костюк СА, Руденкова ТВ, Полуян ОС, Глинкина ТВ. Методология выявления ДНК-возбудителей хламидийно-микоплазменной инфекции в мокроте. Лаб Диагностика. Восточная Европа. 2018;7(4):497-508.
13. Кулага ОК, Костюк СА. Коэффициент перинатальной контагиозности урогенитальных инфекций. Мед Новости. 2007;(14):92-94.
Рецензия
Для цитирования:
Глинкина Т.В. Молекулярно-генетическая диагностика и особенности видовой структуры патогенной флоры при хламидийном и микоплазменном инфицировании респираторного тракта у детей. Проблемы здоровья и экологии. 2019;(4):11-16. https://doi.org/10.51523/2708-6011.2019-16-4-2
For citation:
Glinkina T.V. Molecular Genetic Diagnostics and Features of the Species Structure of the Pathogenic Flora in Chlamydia and Mycoplasma Infection of the Respiratory Tract in Children. Health and Ecology Issues. 2019;(4):11-16. (In Russ.) https://doi.org/10.51523/2708-6011.2019-16-4-2
Просмотров: 310
Послать статью по эл. почте 