Цитологический метод исследования в диагностике уринарной патологии при циррозе печени

Цель исследования. Определить возможности цитологического метода исследования клеточного осадка мочи для диагностики и дифференциальной диагностики патологии почек и мочевыводящих путей при циррозе печени.

Материалы и методы. Проведено стандартное обсервационное исследование 50 госпитализированных пациентов с циррозом печени. Цитологические препараты осадка мочи были приготовлены методами жидкостной цитологии и цитоцентрифугирования и после фиксации окрашены по Романовскому – Гимза, Папаниколау, Граму.

Результаты. При цитологическом исследовании клеточного осадка мочи у госпитализированных пациентов с циррозом печени в 31 % случаев выявлены дисморфичные (выщелоченные) эритроциты, статистически значимо чаще у пациентов с декомпенсацией заболевания и 30-дневной летальностью (р < 0,05). У 63 % пациентов обнаружена микрофлора в моче, чаще смешанного характера (27 %). У 46 % пациентов с декомпенсированным циррозом печени, в том числе с острым почечным повреждением, цитологический препарат мочевого осадка представлен многоклеточными элементами с наличием уротелия поверхностных и глубоких слоев, почечного эпителия.

Заключение. Цитологический метод исследования клеточного осадка мочи — доступный, информативный, недорогой метод диагностики, возможностями которого является обнаружение, характеристика и дифференцировка клеточных элементов (уротелий поверхностных и глубоких слоев, почечный эпителий, выщелоченные эритроциты), микрофлоры и ее источника (генитального тракта, мочевых путей), что в совокупности с другими методами позволяет верифицировать диагноз пациента и проводить дифференциальную диагностику острого тубулярного некроза и гепаторенального синдрома.

1. Huang Y, Cai J, Ha F, Guo B, Xin S, Duan Z, et al. Characteristics of acute kidney injury and its impact on outcome in patients with acute-on-chronic liver failure. BMC Gastroenterol. 2022;22(1):231. DOI: https://doi.org/10.1186/s12876-022-02316-8

2. Atteberry P, Biederman B, Jesudian A, Lucero C, Brown RS Jr, Verna E, et al. Mortality, sepsis, and organ failure in hospitalized patients with cirrhosis vary by type of infection. J Gastroenterol Hepatol. 2021;36(12):3363-3370. DOI: https://doi.org/10.1111/jgh.15633

3. Lingiah VA, Pyrsopoulos NT. Bacterial infections in cirrhotic patients in a tertiary care hospital. J Clin Transl Hepatol. 2021;9(1):32-39. DOI: https://doi.org/10.14218/JCTH.2020.00076

4. Velez JCQ, Therapondos G, Juncos LA. Reappraising the spectrum of AKI and hepatorenal syndrome in patients with cirrhosis. Nat Rev Nephrol. 2020;16(3):137-155. DOI: https://doi.org/10.1038/s41581-019-0218-4

5. Gupta K, Bhurwal A, Law C, Ventre S, Minacapelli CD, Kabaria S, et al. Acute kidney injury and hepatorenal syndrome in cirrhosis. World J Gastroenterol. 2021;27(26):3984-4003. DOI: https://doi.org/10.3748/wjg.v27.i26.3984

6. Chancharoenthana W, Leelahavanichkul A. Acute kidney injury spectrum in patients with chronic liver disease: where do we stand? World J Gastroenterol. 2019;25(28):3684-3703. DOI: https://doi.org/10.3748/wjg.v25.i28.3684

7. Allegretti AS, Solà E, Ginès P. Clinical application of kidney biomarkers in cirrhosis. Am J Kidney Dis. 2020;76(5):710-719. DOI: https://doi.org/10.1053/j.ajkd.2020.03.016

8. Simonetto DA, Gines P, Kamath PS. Hepatorenal syndrome: pathophysiology, diagnosis, and management. BMJ. 2020;370:m2687. DOI: https://doi.org/10.1136/bmj.m2687

9. Udgirkar S, Rathi P, Sonthalia N, Chandnani S, Contractor Q, Thanage R, et al. Urinary neutrophil gelatinase-associated lipocalin determines short-term mortality and type of acute kidney injury in cirrhosis. JGH Open. 2020;4(5):970-977. DOI: https://doi.org/10.1002/jgh3.12377

10. Jaques DA, Spahr L, Berra G, Poffet V, Lescuyer P, Gerstel E, et al. Biomarkers for acute kidney injury in decompensated cirrhosis: a prospective study. Nephrology (Carlton). 2019;24(2):170-180. DOI: https://doi.org/10.1111/nep.13226

11. Wycislo KL, Piech TL. Urinary tract cytology. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2019;49(2):247-260. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2018.11.002

12. Abedini A, Zhu YO, Chatterjee S, Halasz G, Devalaraja-Narashimha K, Shrestha R, et al. Urinary single-cell profiling captures the cellular diversity of the kidney. J Am Soc Nephrol. 2021;32(3):614-627. DOI: https://doi.org/10.1681/ASN.2020050757

13. de Melo CVB, Tavares MB, Fernandes PN, Dos Santos Silva CA, Couto RD, Oliveira MB, et al. Urinary cytology: a potential tool for differential diagnosis of acute kidney injury in patients with nephrotic syndrome. BMC Res Notes. 2020;13(1):401. DOI: https://doi.org/10.1186/s13104-020-05244-6

14. Малаева ЕГ, Зайцева ЛП, Надыров ЭА, Лось ДМ Цитологический метод исследования в диагностике инфекций мочевыводящих путей: возможности и перспективы. B: Актуальные проблемы медицины: сб. науч. ст. Респ. науч.практ. конф. с межд. уч.; 2022 10 ноября; Гомель: ГомГМУ, 2022;3:187-190.

15. Bagshaw SM, Bellomo R. Urine abnormalities in acute kidney injury and sepsis. Contrib Nephrol. 2010;165:274-283. DOI: https://doi.org/10.1159/000313767

16. Зайцева ЛП, Надыров ЭА, Лось ДМ. Оценка экономической эффективности метода жидкостной цитологии при исследовании клеточного осадка мочи. Лабораторная диагностика. Восточная Европа. 2022;11(4):497–505. DOI: https://doi.org/10.34883/PI.2022.11.4.009